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醋酸纖維薄膜電泳分離血清蛋白

時(shí)間:2013-7-5閱讀:569
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實(shí)驗(yàn)原理
醋酸纖維薄膜電泳是用醋酸纖維薄膜作為支持物的電泳方法。它具有簡便、快速、樣品用量少,應(yīng)用范圍廣,分離清晰,沒有吸附現(xiàn)象等優(yōu)點(diǎn)。目前已廣泛用于血清 蛋白、脂蛋白、血紅蛋白、糖蛋白、多肽、核酸、同工酶及其他生物大分子的分析檢測,是醫(yī)學(xué)和臨床檢驗(yàn)的常規(guī)技術(shù)。

本實(shí)驗(yàn)以醋酸纖維素為電泳支持物,分離各種血清 蛋白。血清中含有白蛋白、α-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白和各種脂蛋白等。各種蛋白質(zhì)由于氨基酸 組成、分子量、等電點(diǎn)及形狀不同,在電場中的遷移速度不同。以醋酸纖維素薄膜為支持物,正常人血清在pH8.6的緩沖體系中電泳,染色后可顯示5條區(qū)帶。其中白蛋白的泳動速度zui快,其余依次為α1-、α2-、β-及γ-球蛋白。這些區(qū)帶經(jīng)洗脫后可直接進(jìn)行光吸收掃描自動繪出區(qū)帶吸收峰及相對百分比。

試劑和器材
一、試劑
*緩沖液(pH 8.6,離子強(qiáng)度0.07):*1.66 g,*鈉12.76 g,加水至1000 ml。
置4℃冰箱保存,備用。
染色液:氨基黑10B 0.5 g,甲醇50 ml,冰醋酸10 ml,蒸餾 水40 ml,混勻。
漂洗液:含95%乙醇45 ml,冰醋酸5 ml,蒸餾 水50 ml,混勻。
透明液:冰醋酸25 ml,無水乙醇75 ml,混勻。
二、材料
新鮮血清(未溶血)
三、器材
醋酸纖維薄膜(2×8 cm),培養(yǎng)皿,點(diǎn)樣器,電泳儀 ,玻璃板,粗濾紙 ,鉛筆和直尺,竹鑷子
四、操作方法
1.  浸泡:用鑷子取醋酸纖維薄膜1張(識別光澤面和無光澤面,并在角上用筆做上記號),小心平放在盛有緩沖液的平皿中,浸泡30min左右。
2.  點(diǎn)樣:將浸透的薄膜從緩沖液取出,夾在兩層粗濾紙 內(nèi)吸干多余的液體,然后平鋪在玻璃板上(無光澤面朝上),使其底邊與模板底邊對齊。點(diǎn)樣時(shí),先在點(diǎn)樣器上均勻地沾上血清,再將點(diǎn)樣器輕輕地印在點(diǎn)樣區(qū)內(nèi),使血清*滲透至薄膜內(nèi),形成一定寬度、粗細(xì)均勻的直線。點(diǎn)樣區(qū)距陰1.5 cm處。
 
圖一、醋酸纖維素薄膜規(guī)格及點(diǎn)樣位置示意圖(虛線處為點(diǎn)樣位置)

3.  電泳:根據(jù)電泳槽膜支架的寬度,裁剪尺寸合適的濾紙條。在兩個(gè)電極槽中,各倒入等體積的電泳緩沖液,在電泳槽的兩個(gè)膜支架上,各放兩層濾紙條,使濾紙一端的長邊與支架前沿對齊,另一端浸入電泳緩沖液中。當(dāng)濾紙全部潤濕后,用玻璃棒輕輕擠壓在膜支架上的濾紙以驅(qū)趕氣泡,使濾紙的一端能緊貼在膜支架上,即為濾紙橋。將點(diǎn)樣端的薄膜平貼在陰極電泳槽支架的濾紙橋上(點(diǎn)樣面朝下),另一端平貼在陽支架上。蓋上電泳槽蓋,使薄膜平衡10min。通電,調(diào)節(jié)電流強(qiáng)度0.4-0.6mA/cm膜寬度,電泳時(shí)間約1~1.5小時(shí)。
 
圖二、醋酸纖維薄膜電泳裝置示意圖
1. 濾紙橋 2. 電泳槽 3. 醋酸纖維素薄膜 4. 電泳槽膜支架 5. 電極室*隔板

4.  染色:電泳完畢后將薄膜取下, 放在染色液中浸泡10 min。
5.  漂洗:將薄膜從染色液中取出后移置漂洗液中漂洗數(shù)次,直至背景藍(lán)色脫凈。取出薄膜放在濾紙上,用吹風(fēng)機(jī)將薄膜吹干。
6.  透明:將脫色吹干后的薄膜浸入透明液中,浸泡2~3分鐘后,取出緊貼于潔凈玻璃板上,兩者間不能有氣泡,干后即為透明的薄膜圖譜。
 
圖三、血清蛋白醋酸纖維素薄膜電泳圖譜示意圖

注意事項(xiàng)
(1)市售醋酸纖維素薄膜均為干膜片,薄膜的浸潤與選膜是電泳成敗的關(guān)鍵之一。若飄浮于液面的薄膜在15~30 s 內(nèi)迅速潤濕,整條薄膜色澤深淺一致,則此膜均勻可用于電泳。
(2)醋酸纖維素薄膜電泳常選用pH8.6*-*鈉緩沖液,其濃度為0.05~0.09 mol/L。選擇何種濃度與樣品和薄膜的厚薄有關(guān)。緩沖液濃度過低,則區(qū)帶泳動速度快區(qū)帶擴(kuò)散變寬;緩沖液濃度過高,則區(qū)帶泳動速度慢,區(qū)帶分布過于集中,不易分辨。
(3)點(diǎn)樣時(shí),應(yīng)將薄膜表面多余的緩沖液用濾紙吸去,以免引起樣品擴(kuò)散。但不宜太干,否則樣品不易進(jìn)入膜內(nèi),造成點(diǎn)樣起始點(diǎn)參差不起,影響分離效果。
(4)點(diǎn)樣時(shí),動作要輕、穩(wěn),用力不能太大,以免損壞膜片或印出凹陷影響電泳區(qū)帶分離效果。
(5)電泳時(shí)應(yīng)選擇合適的電流強(qiáng)度,一般電流強(qiáng)度為0.4~0.6 mA/cm膜寬度。電流強(qiáng)度高,則熱效應(yīng)高;電流過低,則樣品泳動速度慢且易擴(kuò)散。

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