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大鼠眼動脈內(nèi)皮細胞

商品屬性：

細胞簡介：

大鼠眼動脈內(nèi)皮分離自眼動脈組織，眼動脈是眼眶及內(nèi)容物主要的血液供應，是頸內(nèi)動脈主要分枝，也是交通顱內(nèi)外血管的重要通道。有研究結果認為，絕大多數(shù)眼動脈起源于ICA剛出海綿竇處，且多數(shù)起源于ICA床突上段內(nèi)上壁，少數(shù)起源于上壁，少數(shù)眼動脈可起源于ICA海綿竇段及腦膜中動脈。眼動脈的走行分為顱內(nèi)段、管內(nèi)段及眶內(nèi)段，眼動脈在管內(nèi)段一般行走于視神經(jīng)上方，顱內(nèi)段和眶內(nèi)段再分為五段：1、短臂；2、A角；3、長臂；4、B角；5、遠側部。眼動脈進入眶內(nèi)后沿視神經(jīng)向下外側走行，終止于眶孔的上內(nèi)側角。眼動脈的分枝一般分為眼組、眶組及眶外組。眼組分為視網(wǎng)膜中央動脈睫前動脈及眼球的脈絡叢；眶組分為淚腺動脈和肌動脈；眶外組分為篩后動脈、篩前動脈、眶上動脈、瞼內(nèi)側動脈、鼻背動脈(終末枝)。眼動脈內(nèi)皮細胞是覆蓋在眼動脈內(nèi)面的單層細胞，可分泌一系列血管活性物質而保持血管穩(wěn)態(tài)，當其受到炎癥或其它因素刺激后穩(wěn)態(tài)被破壞而導致一些血管疾病的發(fā)生。因此，眼動脈內(nèi)皮細胞已成為研究眼部血管疾病發(fā)病機制及治療藥物的工具。內(nèi)皮細胞或血管內(nèi)皮是一薄層的專門上皮細胞，由一層扁平細胞所組成。它形成血管的內(nèi)壁，是血管管腔內(nèi)血液及其他血管壁（單層鱗狀上皮）的接口。內(nèi)皮細胞是沿著整個循環(huán)系統(tǒng)，由心臟直至小的微血管。眼動脈供應整個眼球、眼球附屬器及部分附近組織的營養(yǎng)。眼動脈可發(fā)生痙攣、血栓、栓塞及出血等，均可嚴重影響視力。頸內(nèi)動脈眼動脈瘤簡稱眼動脈瘤，又稱床突旁動脈瘤或頸內(nèi)動脈腹側動脈瘤。眼動脈瘤是位于眼動脈和后交通動脈之間的動脈瘤，占全部顱內(nèi)動脈瘤的0.47%～9.26%，30%～70%患者表現(xiàn)為SAH，1/3有視功能損傷，如視力減退、視野缺損和視神經(jīng)等。體外培養(yǎng)的眼動脈內(nèi)皮細胞對于研究其生理功能、藥物作用以及各種致病因素作用下的病理生理改變具重要意義。

方法簡介：

實驗室分離的大鼠眼動脈內(nèi)皮經(jīng)CD31免疫熒光鑒定，純度可達90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。

質量檢測：

實驗室分離的大鼠眼動脈內(nèi)皮采用-膠原酶聯(lián)合消化法結合差速貼壁法、并通過內(nèi)皮細胞專用培養(yǎng)基培養(yǎng)篩選制備而來，細胞總量約為5×105cells/瓶。

培養(yǎng)信息：

包被條件：PLL（0.1mg/ml），明膠（0.1%）

培養(yǎng)基：基礎培養(yǎng)基，含FBS、EGF、bFGF、IGF、VEGF、Heparin、Hydrocortisone、Penicillin、Streptomycin等

換液頻率：每2-3天換液一次

生長特性：貼壁

細胞形態(tài)：內(nèi)皮細胞樣

傳代特性：可傳2-3代

消化液：0.25%

培養(yǎng)條件：氣相：空氣，95%；CO2，5%

原代細胞VS細胞系：

用酶或機械方法直接從人或動物組織中分離出來的細胞。嚴格來說，從機體分離出來到傳代之前的細胞稱為原代細胞，絕大部分的原代細胞在體外可以分裂10-15次(這與細胞的端粒長短有關)，再加上取材，成本等因素，通常會把培養(yǎng)的第一代到第十代以內(nèi)的細胞統(tǒng)稱為原代細胞。

原代細胞一般傳至10代左右，大部分細胞衰老死亡，但是有極少數(shù)的細胞能夠度過“危機"而繼續(xù)傳下去，存活的細胞一般能夠傳到40-50代，叫細胞株。當50代以后又會出現(xiàn)“危機"，這時有部分細胞的遺傳物質發(fā)生了改變且?guī)в邪┳兊奶攸c，從而可能無限制地傳代下去，稱為細胞系。

也有認為細胞系指原代細胞培養(yǎng)物經(jīng)傳代成功后所繁殖的細胞群體。也指可長期連續(xù)傳代的培養(yǎng)細胞。由此便引申出了后來的有限細胞系、無限細胞系，因此，細胞系狹義的是指可連續(xù)傳代的細胞，廣義是指可傳代的細胞。而細胞株是通過選擇法或克隆形成法，從原代培養(yǎng)物或細胞系中獲得具有特殊性質或標志物的單一細胞稱為細胞株。

細胞系具有容易培養(yǎng)、種類多、價格便宜、無限傳代等優(yōu)點，也非常容易在培養(yǎng)、凍存中發(fā)生錯誤鑒定及交叉污染的問題。

原代細胞培養(yǎng)的具體步驟：

1、準備：取各種已消毒的培養(yǎng)用品置于凈化臺面，紫外線消毒20分鐘。開始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。

2、布局：點燃酒精燈，安裝吸管帽。

3、處理組織：把組織塊置于燒杯中，用Hanks液漂洗2-3次，去除血污；如懷疑組織可能污染，可先置于含有青的混合液中30-60分鐘。

5、消化：或用恒溫水浴，或置于37℃溫箱消化均可，消化中每隔20分鐘應搖動一次，如用電磁恒溫攪拌器消化更好。消化時間依組織塊的大小和組織的硬度而定。

6、分離：在消化過程中見消化液發(fā)混濁時，可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察，如組織已分散成細胞團或單個細胞，立即終止消化，隨即通過適宜不銹鋼篩，濾掉尚未充分消化開的組織塊。低速（500-1000轉/分）離心消化液5分鐘，吸出上清，加入適量含有血清的培養(yǎng)液。

7、計數(shù)：用計數(shù)板計數(shù)，如細胞懸液細胞密度過大，再補加培養(yǎng)液調整后，分裝入培養(yǎng)瓶中。對大多數(shù)細胞來說，pH要求在7.2-7.4范圍，培養(yǎng)液呈微紅色，如顏色偏黃，說明液體變酸，可用NaHCO3調整。

8、培養(yǎng)：置于37℃溫箱培養(yǎng)，如用CO2溫箱培養(yǎng)，瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞，紗布塞易生霉菌，每次換液時需要換新塞。

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