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常規(guī)PCR,環(huán)介導(dǎo)的恒溫PCR(LAMP),重組酶聚合酶擴(kuò)增(RPA)

時間:2020-4-22閱讀:4177

常規(guī)PCR,環(huán)介導(dǎo)的恒溫PCR(LAMP),重組酶聚合酶擴(kuò)增(RPA)三種分子擴(kuò)增技術(shù)原理和對比

常規(guī)PCR

       PCR即聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase chain reaction)的縮寫,1983年出現(xiàn)的一種對已知DNApian段進(jìn)行體外擴(kuò)增的技術(shù)。它利用耐高溫的DNA聚合酶(Taq 酶),將模板DNA,引物,脫氧核苷三磷酸(dNTP)和緩沖液等在不同溫度間循環(huán),從而達(dá)到雙鏈DNA分離,引物粘合到模板上的互補區(qū)間,zui后在DNA聚合酶作用下脫氧核苷三磷酸逐個添加到新合成的DNA鏈上的過程。通過PCR技術(shù),特定DNAPIAN段可以達(dá)到指數(shù)級別的擴(kuò)增,從原來的少量DNA分子擴(kuò)增到可以用儀器檢測的水平,利用這一特點可以對一些特異的病原或疾病標(biāo)志物進(jìn)行診斷。


       近幾年,由于PCR技術(shù)的不斷成熟,特別是實時熒光定量PCR(qPCR)的出現(xiàn),使得基于qPCR的分子診斷產(chǎn)品日漸成為主流。但常規(guī)的PCR技術(shù)由于熱循環(huán)的需要,使這一技術(shù)*依賴于電源和昂貴的PCR儀器,從而限制了這一技術(shù)在實驗室之外的應(yīng)用。由于這些缺點,科學(xué)界一直在試圖發(fā)展不需要使用PCR儀器的核酸擴(kuò)增方法,恒溫核酸擴(kuò)增技術(shù)的發(fā)展成為一個不可逆轉(zhuǎn)的趨勢。
主要的步驟:
★DNA變性 加熱使靶DNA序列雙鏈解離成單鏈DNA。
★引物與靶DNA退火 適當(dāng)降低溫度,使兩個引物分別結(jié)合成靶DNA兩條的3′末端向5′末端延伸。
★引物延伸 在DNA聚合酶的催化下,引物沿著靶DNA3′末端向5′末端延伸。新合成的DNA鏈在變性解離后,又可作為模板與引物雜交,并且在DNA聚合酶的催化下,引導(dǎo)合成新的靶DNA鏈。如此反復(fù)進(jìn)行以上3個步驟,即可使靶DNApian段指數(shù)性擴(kuò)增。

 

環(huán)介導(dǎo)恒溫核酸擴(kuò)增(LAMP
       環(huán)介導(dǎo)恒溫核酸擴(kuò)增(LAMP)是日本學(xué)者Notomi等在2000年發(fā)表的一種核酸擴(kuò)增的方法,他利用特殊的引物設(shè)計方法和恒溫核酸鏈置換酶將少量目標(biāo)DNA在60分鐘內(nèi)擴(kuò)增到千百萬份。LAMP反應(yīng)中需要4-6個引物,這些引物特異性的識別模板DNA的6-8個DNA區(qū)間。在每一套LAMP的引物中,包括兩個外部引物(F3和B3),兩個內(nèi)部引物(FIP和BIP)以及兩個環(huán)導(dǎo)引物(loop F和loop B)。LAMP引物設(shè)計和反應(yīng)原理如圖1所示。

 

 

      LAMP的反應(yīng)混合物由dNTPs,鏈置換聚合酶,熒光染料,引物和DNA模板組成。用于LAMP反應(yīng)的引物設(shè)計,其特征在于使用四種不同的引物,這些引物是專門設(shè)計用于識別靶DNA的六個不同區(qū)域的。前內(nèi)引物(FIP)由3' 末端的F2區(qū)和5' 末端的F1c區(qū)組成;正向外引物(F3引物)由F3區(qū)組成,其與模板序列的F3c區(qū)互補;向后內(nèi)部引物(BIP)由3' 末端的B2區(qū)域和5' 末端的B1c區(qū)域組成。向后外引物(B3引物)由B3區(qū)組成,其與模板序列的B3c區(qū)互補。當(dāng)FIP的F2區(qū)與靶DNA的F2c區(qū)雜交并啟動互補鏈合成時,擴(kuò)增開始,然后F3引物與靶DNA的F3c區(qū)域雜交并延伸,取代FIP連接的互補鏈。該置換鏈在5' 末端形成環(huán),這種在5' 末端具有環(huán)的單鏈DNA然后用作BIP的模板,B2與模板DNA的B2c區(qū)域雜交,啟動DNA合成,導(dǎo)致形成互補鏈并打開5' -末端環(huán),隨后,B3與靶DNA的B3c區(qū)域雜交并延伸,置換BIP連接的互補鏈,這導(dǎo)致形成啞鈴形DNA。通過Bst DNA聚合酶將核苷酸添加到F1的3' 末端,其在5' 末端延伸并打開環(huán),啞鈴形DNA現(xiàn)在轉(zhuǎn)變?yōu)榍o環(huán)結(jié)構(gòu)(參見a和b)。該結(jié)構(gòu)用作LAMP循環(huán)的引發(fā)劑,其是LAMP反應(yīng)的第二階段。也可以添加環(huán)引物用于LAMP的指數(shù)擴(kuò)增,獲得的zui終產(chǎn)品是具有不同莖長度的莖環(huán)DNA和具有多個環(huán)的各種類似于菜花的結(jié)構(gòu)的混合物。

 

重組酶聚合酶擴(kuò)增(RPA)

      重組酶聚合酶擴(kuò)增(RPA),被稱為是可以替代PCR的核酸檢測技術(shù)。RPA技術(shù)主要依賴于三種酶:能結(jié)合單鏈核酸(寡核苷酸引物)的重組酶、單鏈DNA結(jié)合蛋白(SSB)和鏈置換DNA聚合酶。這三種酶的混合物在常溫下也有活性,*反應(yīng)溫度在37℃左右。重組酶與引物結(jié)合形成的蛋白-DNA復(fù)合物,能在雙鏈DNA中尋找同源序列。一旦引物定位了同源序列,就會發(fā)生鏈交換反應(yīng)形成并啟動DNA合成,對模板上的目標(biāo)區(qū)域進(jìn)行指數(shù)式擴(kuò)增。被替換的DNA鏈與SSB結(jié)合,防止進(jìn)一步替換。在這個體系中,由兩個相對的引物起始一個合成事件(見圖2)。整個過程進(jìn)行得非???,一般可在十分鐘之內(nèi)獲得可檢出水平的擴(kuò)增產(chǎn)物 (Piepenburg等,2006)。

      RPA不但可以快速擴(kuò)增,還支持在同一個管中同時進(jìn)行多個擴(kuò)增反應(yīng)。不過,多重化的引物組合需要精心設(shè)計,以便每個引物都能同樣有效的工作。需要注意的是,RPA反應(yīng)的引物總量(nmol)好不要超標(biāo)太多。如果在一個反應(yīng)中使用兩個以上的擴(kuò)增引物,就應(yīng)該控制不同引物的量。另外,檢測多個擴(kuò)增事件的探針、設(shè)備以及熒光物質(zhì)的兼容性都需要提前考慮。RPA還可以對模板進(jìn)行定量。因為擴(kuò)增產(chǎn)物達(dá)到可檢出水平的時間,是依賴于反應(yīng)起始時的模板量。初始模板的拷貝越多,擴(kuò)增產(chǎn)物就越快達(dá)到可檢出水平。不過,這種定量需要精心的實驗安排,確保對照反應(yīng)是同時開始的。舉例來說,可以利用鎂離子的添加時間進(jìn)行控制。因為鎂離子一旦進(jìn)入體系,RPA反應(yīng)就會開始。此外,較慢的擴(kuò)增過程有助于更精確的定量。我們可以通過調(diào)整反應(yīng)條件或引物設(shè)計來減慢RPA的反應(yīng)速度。目前大多數(shù)RPA相關(guān)產(chǎn)品還是由英國的Twist Dx開發(fā)的。

重組酶/引物復(fù)合物尋找模板DNA的同源序列(紅色/藍(lán)色)。鏈交換后,置換的鏈由gp32(綠色)結(jié)合,引物通過Bst聚合酶(藍(lán)色)延伸。兩個引物結(jié)合/延伸zui終產(chǎn)生一個完整的擴(kuò)增拷貝。重復(fù)該過程導(dǎo)DNA指數(shù)擴(kuò)增。(Piepenburg等,2006)

 

簡短技術(shù)對比圖

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