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中級(jí)會(huì)員 | 第14年

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標(biāo)準(zhǔn)品
培養(yǎng)基
培養(yǎng)基原料 霍亂弧菌診斷血清 大腸艾希氏菌診斷血清 志賀氏菌屬診斷血清 沙門氏菌屬診斷血清 標(biāo)準(zhǔn)血清,診斷血清 抗生素藥敏紙片 微生物配套試劑 微生物生化管 管裝培養(yǎng)基 即用型液體培養(yǎng)基 一次性培養(yǎng)基平板 顯色培養(yǎng)基 臨床培養(yǎng)基 菌種保存培養(yǎng)基 四環(huán)素檢定、厭氧亞硫酸鹽還原桿菌檢測(cè)培養(yǎng)基 維生素檢測(cè)培養(yǎng)基 一次性衛(wèi)生用品衛(wèi)生檢測(cè)培養(yǎng)基 罐頭食品商業(yè)無(wú)菌檢測(cè)培養(yǎng)基 飲用水及水源檢測(cè)培養(yǎng)基 藥品、生物制品檢測(cè)培養(yǎng)基 化妝品檢測(cè)培養(yǎng)基 動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基 啤酒檢驗(yàn)培養(yǎng)基 軍團(tuán)菌檢測(cè)培養(yǎng)基 支原體檢測(cè)培養(yǎng)基 小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 彎曲桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 產(chǎn)氣莢膜梭菌、肉毒梭菌、厭氧菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 阪崎腸桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 溶血性鏈球菌檢測(cè)培養(yǎng)基 李斯特氏菌檢測(cè)培養(yǎng)基 弧菌檢測(cè)培養(yǎng)基 乳酸菌、雙歧桿菌檢測(cè)培養(yǎng)基 酵母、霉菌檢測(cè)培養(yǎng)基 檢測(cè)培養(yǎng)基 沙門氏菌、志賀氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 大腸菌群、糞大腸菌群、大腸桿菌及腸桿菌科檢測(cè)培養(yǎng)基 細(xì)菌總數(shù)檢測(cè),增菌培養(yǎng)基
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引物設(shè)計(jì)原則

時(shí)間:2016-4-14閱讀:1175
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1. 引物的長(zhǎng)度一般為15-30 bp,常用的是18-27 bp,但不應(yīng)大于38,因?yàn)檫^(guò)長(zhǎng)會(huì)導(dǎo)致其延伸溫度大于74,不適于Taq dna聚合酶進(jìn)行反應(yīng)。
2. 引物序列在模板內(nèi)應(yīng)當(dāng)沒有相似性較高,尤其是3’端相似性較高的序列,否則容易導(dǎo)致錯(cuò)配。引物3’端出現(xiàn)3個(gè)以上的連續(xù)堿基,如GGGCCC,也會(huì)使錯(cuò)誤引發(fā)機(jī)率增加。
3. 引物3’端的末位堿基對(duì)Taq酶的DNA合成效率有較大的影響。不同的末位堿基在錯(cuò)配位置導(dǎo)致不同的擴(kuò)增效率,末位堿基為A的錯(cuò)配效率明顯高于其他3個(gè)堿基,因此應(yīng)當(dāng)避免在引物的3’端使用堿基A。另外,引物二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu)也可能導(dǎo)致PCR反應(yīng)失敗。5’端序列對(duì)PCR影響不太大,因此常用來(lái)引進(jìn)修飾位點(diǎn)或標(biāo)記物。
4. 引物序列的GC含量一般為40-60%,過(guò)高或過(guò)低都不利于引發(fā)反應(yīng)。上下游引物的GC含量不能相差太大。
5. 引物所對(duì)應(yīng)模板位置序列的Tm值在72左右可使復(fù)性條件。Tm值的計(jì)算有多種方法,如按公式Tm4(G+C)2(A+T),在oligo軟件中使用的是zui鄰近法(the nearest neighbor method)
6. ΔG值是指DNA雙鏈形成所需的自由能,該值反映了雙鏈結(jié)構(gòu)內(nèi)部堿基對(duì)的相對(duì)穩(wěn)定性。應(yīng)當(dāng)選用3’ΔG值較低(值不超過(guò)9),而5’端和中間ΔG值相對(duì)較高的引物。引物的3’端的ΔG值過(guò)高,容易在錯(cuò)配位點(diǎn)形成雙鏈結(jié)構(gòu)并引發(fā)DNA聚合反應(yīng)。
7. 引物二聚體及發(fā)夾結(jié)構(gòu)的能值過(guò)高(超過(guò)4.5kcal/mol)易導(dǎo)致產(chǎn)生引物二聚體帶,并且降低引物有效濃度而使PCR反應(yīng)不能正常進(jìn)行。
8. 對(duì)引物的修飾一般是在5’端增加酶切位點(diǎn),應(yīng)根據(jù)下一步實(shí)驗(yàn)中要插入PCR產(chǎn)物的載體的相應(yīng)序列而確定。

引物序列應(yīng)該都是寫成5-3方向的,
Tm之間的差異控制在1度之內(nèi),
另外我覺得擴(kuò)增長(zhǎng)度大一些比較好,500bp左右。
要設(shè)計(jì)引物首先要找到DNA序列的保守區(qū)。同時(shí)應(yīng)預(yù)測(cè)將要擴(kuò)增的片段單鏈?zhǔn)欠裥纬啥?jí)結(jié)構(gòu)。如這個(gè)區(qū)域單鏈能形成二級(jí)結(jié)構(gòu),就要避開它。如這一段不能形成二級(jí)結(jié)構(gòu),那就可以在這一區(qū)域設(shè)計(jì)引物。
引物應(yīng)用核酸系列保守區(qū)內(nèi)設(shè)計(jì)并具有特異性。 產(chǎn)物不能形成二級(jí)結(jié)構(gòu)。 引物長(zhǎng)度一般在15~30堿基之間。 G+C含量在40%~60%之間。 堿基要隨機(jī)分布。 引物自身不能有連續(xù)4個(gè)堿基的互補(bǔ)。 引物之間不能有連續(xù)4個(gè)堿基的互補(bǔ)。 引物5′端可以修飾。 引物3′端不可修飾。 引物3′端要避開密碼子的第3位。

1.引物的特異性 引物與非特異擴(kuò)增序列的同源性不要超過(guò)70%或有連續(xù)8個(gè)互補(bǔ)堿基同源。 
2.避開產(chǎn)物的二級(jí)結(jié)構(gòu)區(qū) 某些引物無(wú)效的主要原因是引物重復(fù)區(qū)DNA二級(jí)結(jié)構(gòu)的影響,選擇擴(kuò)增片段時(shí)避開二級(jí)結(jié)構(gòu)區(qū)域。用有關(guān)計(jì)算機(jī)軟件可以預(yù)測(cè)估計(jì)mRNA的穩(wěn)定二級(jí)結(jié)構(gòu),有助于選擇模板。實(shí)驗(yàn)表明,待擴(kuò)區(qū)域自由能()小于58.6lkJ/mol時(shí),擴(kuò)增往往不能成功。若不能避開這一區(qū)域時(shí),用7-deaza-2′-脫氧GTP取代dGTP對(duì)擴(kuò)增的成功是有幫助的。 
3.長(zhǎng)度 寡核苷酸引物長(zhǎng)度為15~30bp,一般為20~27mer。引物的有效長(zhǎng)度:Ln=2G+C+A+T),Ln值不能大于38,因?yàn)?/span>>38時(shí),zui適延伸溫度會(huì)超過(guò)Taq DNA聚合酶的zui適溫度(74),不能保證產(chǎn)物的特異性。 
4.G+C含量 G+C含量一般為40%~60%。其Tm值是寡核苷酸的解鏈溫度,即在一定鹽濃度條件下,50%寡核苷酸雙鏈解鏈的溫度,有效啟動(dòng)溫度,一般高于Tm5~10。若按公式Tm=4G+C+2A+T)估計(jì)引物的Tm值,則有效引物的Tm55~80,其Tm值接近72以使復(fù)性條件。 
5.堿基礎(chǔ)隨機(jī)分布 引物中四種堿基的分布是隨機(jī)的,不要有聚嘌呤或聚嘧啶的存在。尤其3′端不應(yīng)超過(guò)3個(gè)連續(xù)的GC,因這樣會(huì)使引物在G+C富集序列區(qū)錯(cuò)誤引發(fā)。
6.引物自身 引物自身不應(yīng)存在互補(bǔ)序列,否則引物自身會(huì)折疊成發(fā)夾狀結(jié)構(gòu)牙引物本身復(fù)性。這種二級(jí)結(jié)構(gòu)會(huì)因空間位阻而影響引物與模板的復(fù)性結(jié)合。若用人工判斷,引物自身連續(xù)互補(bǔ)堿基不能大于3bp。 7.引物之間 兩引物之間不應(yīng)不互補(bǔ)性,尤應(yīng)避免3′端的互補(bǔ)重疊以防引物二聚體的形成。一對(duì)引物間不應(yīng)多于4個(gè)連續(xù)堿基的同源性或互補(bǔ)性。 8.引物的3′ 引物的延伸是從3′端開始的,不能進(jìn)行任何修飾。3′端也不能有形成任何二級(jí)結(jié)構(gòu)可能,除在特殊的PCRAS-PCR)反應(yīng)中,引物3′端不能發(fā)生錯(cuò)配。 在標(biāo)準(zhǔn)PCR反應(yīng)體系中,用2U Taq DNA聚合酶和800μmol/L dNTP(四種dNTP200μmol/L)以質(zhì)粒(103拷貝)為模板,按9525s;5525s;72,1min的循環(huán)參數(shù)擴(kuò)增HIV-1 gag基因區(qū)的條件下,引物3′端錯(cuò)配對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物的影響是有一定規(guī)律的。AA錯(cuò)配使產(chǎn)量下降至1/20,AGCC錯(cuò)七下降至1/100。引物A:模板G與引物G:模板A錯(cuò)配對(duì)PCR影響是等同的。 9.引物的5′ 引物的5′端限定著PCR產(chǎn)物的長(zhǎng)度,它對(duì)擴(kuò)增特異性影響不大。因此,可以被修飾而不影響擴(kuò)增的特異性。引物5′端修飾包括:加酶切位點(diǎn);標(biāo)記、熒光、、Eu3+等;引入蛋白質(zhì)結(jié)合DNA序列;引入突變位點(diǎn)、插入與缺失突變序列和引入一啟動(dòng)子序列等。 10.密碼子的簡(jiǎn)并 如擴(kuò)增編碼區(qū)域,引物3′端不要終止于密碼子的第3位,因密碼子的第3位易發(fā)生簡(jiǎn)并,會(huì)影響擴(kuò)增特異性與效率。
Hairpin 發(fā)卡結(jié)構(gòu)
如果自由能值大于0 則該結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定從而不會(huì)干擾反應(yīng)如果自由能值小于0 則該結(jié)構(gòu)可以干擾反應(yīng)
二聚體可以在序列相同的兩條引物或正反向。引物之間形成如果配對(duì)區(qū)域在3 末端問(wèn)題會(huì)更為嚴(yán)重3 末端配對(duì)很容易引起引物二聚
體擴(kuò)增使
Pair Rating 匹配度評(píng)分匹配度低的引物對(duì)常常不太有效是因?yàn)樵谕瑯油嘶饻囟认?/span>Tm低的引物決定擴(kuò)增的特異性而Tm高的引物更易于形成非特異性結(jié)合而造成錯(cuò)誤的起始
1】引物的長(zhǎng)度以1530bp為宜,否則會(huì)影響擴(kuò)增的特異性。
2 】堿基盡可能隨機(jī)分布,避免相同的堿基成串排列,引物的G+C含量在40%-60%之間,若G+C含量太低,可在5"端加上一些GC,若GC含量太高,可在5"端加上一些AT。
3 應(yīng)避免每條引物內(nèi)部形成二級(jí)結(jié)構(gòu)及兩條引物的3"端互補(bǔ)形成引物二聚體,避免在引物的3"端有3個(gè)G3個(gè)C成串排列,3"端的末位堿基選TC、G,而不選A,也有建議在引物的兩端用12個(gè)嘌呤堿基。
4 盡可能使用兩條引物的Tm值相同(相差不要超過(guò)5),退火溫度根據(jù)較低的Tm值選定,也可以通過(guò)改變引物的長(zhǎng)度來(lái)平衡兩條引物的退火溫度。Tm值可以根據(jù)Tm=4(G+C)+2(A+T)計(jì)算。而對(duì)于較長(zhǎng)的引物,Tm值需要考慮動(dòng)力學(xué)參數(shù)、從zui近鄰位的計(jì)算方式得到,現(xiàn)有的PCR引物設(shè)計(jì)軟件大多數(shù)都采用這種方式。(注:對(duì)于Tm值的計(jì)算有爭(zhēng)議的地方是附加序列應(yīng)不應(yīng)該計(jì)算在內(nèi),我覺得有值得商討的地方。因?yàn)閺睦碚撋现挥衵ui開始的循環(huán)引物的附加序列是不與模板鏈結(jié)合的,而在后來(lái)的PCR反應(yīng)中,引物的附加序列是和模板鏈結(jié)合了的。)
5 引物的3’端要與模板嚴(yán)格配對(duì),而5’端堿基沒有嚴(yán)格的限制,只要與模板DNA結(jié)合的部分足夠長(zhǎng),其5’端堿基可不與模板DNA配對(duì)而呈游離狀態(tài),這樣,我們可以在引物的5末端加上酶切位點(diǎn)(引入酶切位點(diǎn)時(shí),要考慮到進(jìn)行雙酶切的共用緩沖液,否則給下游工作帶來(lái)困難)、啟動(dòng)子,方便下游操作。
6 不要在擴(kuò)增序列的二級(jí)結(jié)構(gòu)區(qū)設(shè)計(jì)引物,以免退火困難。也要考慮引物設(shè)計(jì)處模板的特異性。

 

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