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細(xì)胞凍存實驗操作流程

時間:2025/2/20閱讀:25
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實驗原理:

隨著溫度降低,細(xì)胞內(nèi)的酶活性會逐漸降低,到-70℃左右,酶活性幾乎為0,代謝活動停止,可以實現(xiàn)長期保存。然而,隨著溫度降低,細(xì)胞內(nèi)外的水分也會“結(jié)冰"并形成冰晶,冰晶能導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)發(fā)生機械損傷、電解質(zhì)升高、滲透壓改變、脫水、pH改變、蛋白變性等,能引起細(xì)胞死亡。因此常加入冷凍保護劑甘油或二甲基亞砜(DMSO)。DMSO能快速穿透細(xì)胞膜進入細(xì)胞,降低冰點,延緩凍存過程,同時增加細(xì)胞膜的通透性,提高細(xì)胞內(nèi)離子濃度,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而達到保護細(xì)胞的目的。

實驗操作流程:

1. 制備凍存液,凍存液比例:本實驗室采用70%基礎(chǔ)培養(yǎng)基+20%FBS+10%DMSO,不同實驗室及不同細(xì)胞可能略有差異,也可采用55%基礎(chǔ)培養(yǎng)基+40%FBS+5%DMSO;

2. 取形態(tài)良好,處于對數(shù)生長期的細(xì)胞,對其消化、離心 (1500rpm離心8min)、計數(shù);

3. 根據(jù)細(xì)胞數(shù)量加入對應(yīng)的凍存液,使細(xì)胞密度維持在300-500w/mL;

4. 小心用鑷子打開凍存管管蓋,每管分裝1-1.5mL含細(xì)胞的凍存液,擰緊蓋管,做好標(biāo)記。

5. 分裝好的凍存管轉(zhuǎn)入程序降溫盒后直接放-80℃過夜;

6. 若沒有程序降溫盒,則按下列順序依次降溫:室溫→4℃20min→-20℃30min→-80℃過夜,注意轉(zhuǎn)移過程中要保冷,避免產(chǎn)生溫差或凍存管融化;

7. 從-80℃冰箱取出凍存管迅速轉(zhuǎn)移到液氮長期保存。

注意事項:

1. 細(xì)胞凍存原則為“慢凍",即讓細(xì)胞在緩慢降溫的條件下逐漸冷凍。當(dāng)細(xì)胞快速冷凍時,水和離子往往會留在細(xì)胞中,細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成會撕裂和刺穿細(xì)胞膜。相反,如果細(xì)胞冷凍太過緩慢,則細(xì)胞外的水會在細(xì)胞內(nèi)冰形成之前結(jié)冰。這允許水通過滲透作用逸出,但增加了可能有毒的細(xì)胞內(nèi)溶質(zhì)的濃度。因此對于大多數(shù)細(xì)胞,最佳冷凍速率在每分鐘1℃之間。

2. DMSO能夠快速穿透細(xì)胞膜進入細(xì)胞中,延緩溫度下降速度,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而起到保護細(xì)胞的作用。

3. 凍存可用10%~90%的血清,一般高濃度血清有助于維護細(xì)胞活力,此處介紹20%終濃度有利于細(xì)胞懸浮而少沉積(4℃時),復(fù)蘇存活率在80%~90%,對原代培養(yǎng)細(xì)胞,以90%血清凍存更為有效。

4. 細(xì)胞離心后盡量吸干凈上清液,減少培養(yǎng)基殘留,避免稀釋凍存液。

5. DMSO溶于培養(yǎng)基時,將釋放大量熱量,所以細(xì)胞凍存液需提前配制,冷卻后再使用,不能直接將DMSO加入含有細(xì)胞的培養(yǎng)基中,避免燙傷細(xì)胞。

6. 細(xì)胞凍存和復(fù)蘇過程中,不可避免會損失部分細(xì)胞,所以凍存的密度不能太低。推薦密度為300-500w/mL。

7. 細(xì)胞懸液加入凍存液以后盡量短時間的在常溫放置,DMSO常溫下對細(xì)胞損傷大,分裝完成后立即轉(zhuǎn)入程序降溫盒。



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