HG TaqMan miRNA反轉錄試劑盒

描述： TaqMan miRNA 反轉錄試劑盒采用加 A 法進行反轉錄，加 A 法的反轉錄效率遠高于莖環(huán)法，因 此，采用該方法可極大的提高檢測靈敏度（原理見圖 1）。 該試劑盒操作簡單，僅需要兩步即可輕松完成 miRNA 的 cDNA 合成，合成的 cDNA 可用于所有 miRNA 的后續(xù)定 量檢測。反轉錄完畢后采用特異性的上游引物和接頭引物 進行 PCR 擴增，F(xiàn)AM 標記 TaqMan 探針作為熒光報告基 團進行定量檢測（原理見圖 1）。  TaqMan miRNA 反轉錄試劑盒專用于 miRNAs 分子的反轉錄試驗，轉錄獲得的 cDNA 產物用于 TaqMan 定量 PCR 方法檢測 miRNAs 分子

儲存：請置于-20°C，可保存 2 年；避免反復凍融
操作方法
1 按以下組分在 0.2 ml EP 管中配制應液
miRNA （5～100 ng/μl） 4 μl
5×TaqMan miRNA RT Solution A 1 μl
注意：不建議使用 Total RNA，Total RNA 試驗結果通常差
于 miRNA。
2 在 PCR 儀上按以下條件進行加 A 反應:
 37°C 30min
 85°C 5min
3 反應完畢后，在上述 5μl 反應體系中加入如下試劑，并
混合均勻。
10×TaqMan miRNA RT Primer 2 μl
10×TaqMan miRNA RT Solution B 2 μl
H2O 11 μl
4 在 PCR 儀上按以下條件進行反轉錄反應:
 30°C 5min
55°C 60min
 95°C 5min
獲得的 cDNA 產物可用于多個目標 miRNA 的檢測。反轉錄完畢后獲得的 miRNA cDNA，可加入 20~80μl ddH20 稀釋2~5 倍，通常取 2μl 即可用于 HG TaqMan miRNA 定量 PCR試劑盒檢測。

一、模板DNA：PCR反應需要模板DNA，如從細胞、組織、血液中提取DNA等；

二、引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區(qū)域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；

三、dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂、DNA合成         等生物學過程，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；

四、Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴增DNA鏈；

五、PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調節(jié)反應pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性，從而提高反應效率；

六、酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構建和測序等等實驗步驟，常常需要進行酶切操作。

七、MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具。

八、DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產物；

①Oligo dT
選擇Oligo dT時，要求RNA必須有Poly A，所以真核生物的mRNA都適用。適合長鏈甚至全長mRNA的RT，對RNA樣品的質量要求較高，不要有明顯的DNA污染、RNA降解和RNA斷裂。假如想探索新的mRNA進行RT反應，建議推薦使用Oligo dT引物。使用Oligo dT引物要比隨機引物和特異性引物的穩(wěn)定性要好。
②隨機引物
適合各種RNA的RT，尤其適合模板豐度很低的情況（比如某個gene表達量很低）。選擇隨機引物時，鏈cDNA合成反應中就是以所有的RNA為模板，然后進行PCR反應時設計引物進行特異性擴增。同時要注意隨機引物的量和總RNA量之間的關系，一般建議每5µg總RNA的隨機引物的用量為50ng，如果每5µg總RNA的隨機引物的用量超過250ng，可能會導致小片段產物（＜500bp）的增加和長片段、全長產物的降低。
③特異性引物
基因特異性引物（GSP）是某個基因序列的一部分，與模板互補的引物。該引物需要結合目標RNA的已知序列進行設計。由于引物和RNA序列特異性結合，每個目標RNA都需要一套新的基因特異性引物。因此，當分析多種目標時，則需要適用更多的RNA樣本。而且不同引物退火溫度本來就不相同，所以一般不推薦使用。如需要使用特異性引物，建議對退火溫度進行優(yōu)化。